我國(guó)藥典中規(guī)定，新生牛血清是從出生14小時(shí)內(nèi)未進(jìn)食的新生牛采血分離血清，經(jīng)除菌過(guò)濾后制成。牛血清生產(chǎn)過(guò)程中不得任意添加其他物質(zhì)成分。新生牛血清應(yīng)進(jìn)行以下檢查，符合規(guī)定后方可使用。

如釆用經(jīng)過(guò)驗(yàn)證的病毒滅活工藝處理的牛血清，大腸埃希菌噬菌體及病毒檢測(cè)必須在滅活前取樣進(jìn)行。

pH值：應(yīng)為7.00~8.50。

蛋白質(zhì)含量：采用雙縮脲法（通則0731第三法）或其他適宜方法測(cè)定，應(yīng)為35~50g/L。

血紅蛋白：用分光光度法或其他適宜的方法測(cè)定，應(yīng)不高于200mg/L。

滲透壓摩爾濃度：應(yīng)為250~330mOsmol/kg（通則0632）。

細(xì)菌內(nèi)毒素檢查：應(yīng)不高于10EU/ml（通則1143凝膠限度試驗(yàn)）。

支持細(xì)胞增殖檢查：采用傳代細(xì)胞（HFL1、Mv1 Lu、Vero和CHO）中的任意1種細(xì)胞及Sp2/0-Ag14細(xì)胞進(jìn)行。細(xì)胞復(fù)蘇后，用待測(cè)樣品配制的培養(yǎng)液至少連續(xù)傳3代后使用，取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于試驗(yàn)。

（1）細(xì)胞生長(zhǎng)曲線的測(cè)定  取供試品按10%濃度配制細(xì)胞培養(yǎng)液，Sp2/0-Ag14按每1ml含1×10^4的細(xì)胞濃度，其他貼壁細(xì)胞按2×104的細(xì)胞濃度接種細(xì)胞，每天計(jì)數(shù)活細(xì)胞，連續(xù)觀察1周，并繪制生長(zhǎng)曲線。

（2）細(xì)胞倍增時(shí)間的測(cè)定  按生長(zhǎng)曲線計(jì)算細(xì)胞的倍增時(shí)間。取細(xì)胞峰值前一天的細(xì)胞計(jì)數(shù)（Y）、接種細(xì)胞數(shù)（X）及生長(zhǎng)時(shí)間（T）計(jì)算。

Sp2/0-Ag14細(xì)胞應(yīng)不超過(guò)20小時(shí)；HFL1細(xì)胞應(yīng)不超過(guò)22小時(shí)；Mv1 Lu細(xì)胞應(yīng)不超過(guò)24小時(shí)；Vero細(xì)胞應(yīng)不超過(guò)18小時(shí)；CHO細(xì)胞應(yīng)不超過(guò)22小時(shí)。

（3）克隆率的測(cè)定  將細(xì)胞稀釋至每1ml含10個(gè)活細(xì)胞的濃度，按每孔1個(gè)細(xì)胞接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板，每板至少接種60孔，于37℃、5%二氧化碳培養(yǎng)，定期觀察細(xì)胞克隆生長(zhǎng)情況，培養(yǎng)1周后計(jì)數(shù)每孔中的細(xì)胞克隆數(shù)，并計(jì)算克隆率，應(yīng)不低于70%。

無(wú)菌檢查：依法則檢查（通則1101），應(yīng)符合規(guī)定。

支原體檢查：依法則檢查（通則3301），應(yīng)符合規(guī)定。

大腸埃希菌噬菌體：采用噬斑法和增殖法檢測(cè)。不得有噬菌體污染。

病毒檢查：

（1）樣品制備　取約250ml的新生牛血清供試品用于檢測(cè)，將其配制成含15%供試品的培養(yǎng)液，用于檢測(cè)全過(guò)程的細(xì)胞換液及傳代，以檢測(cè)合格的血清作為陰性對(duì)照血清。

（2）指示細(xì)胞制備　至少采用猴源（如Vero細(xì)胞）、2種牛源細(xì)胞（BT和MDBK細(xì)胞或無(wú)病毒污染的原代牛腎細(xì)胞）以及人二倍體細(xì)胞作為指示細(xì)胞，細(xì)胞復(fù)蘇后至少傳代1次后使用，根據(jù)所需量制備足夠量的細(xì)胞。

（3）用含有供試品的培養(yǎng)液將4種指示細(xì)胞分別接種于75cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶中，接種量應(yīng)使細(xì)胞在培養(yǎng)7天后可達(dá)到至少80%～90%匯合。同時(shí)制備陰性對(duì)照血清培養(yǎng)瓶。將培養(yǎng)瓶置37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至少7天?？稍诘?span>5天時(shí)換液一次。

（4）第7天進(jìn)行第1次盲傳，將接種供試品及陰性對(duì)照的每種指示細(xì)胞培養(yǎng)瓶分別傳出至少2個(gè)75cm2培養(yǎng)瓶，繼續(xù)培養(yǎng)至第14天，在第12天時(shí)可換液一次。

（5）在第13天時(shí)（或第2次傳代前1天）或陰性對(duì)照瓶細(xì)胞達(dá)到至少70%匯合時(shí)，制備陽(yáng)性對(duì)照用細(xì)胞。即取1個(gè)陰性對(duì)照細(xì)胞瓶分別傳至6孔板或其他適宜的細(xì)胞板中用于細(xì)胞病變觀察（CPE）、血吸附檢查（HAd）及熒光抗體檢測(cè)（IF），次日接種陽(yáng)性對(duì)照病毒。

（6）第14天時(shí)進(jìn)行第2次盲傳。將第1次傳代后的細(xì)胞培養(yǎng)物分別傳至6孔板或其他適宜的細(xì)胞板中，進(jìn)行細(xì)胞病變觀察及HAd檢查時(shí)，接種于每種指示細(xì)胞上的待測(cè)樣本至少接種3孔；進(jìn)行熒光抗體檢測(cè)時(shí)，接種于每種指示細(xì)胞上的待測(cè)樣本進(jìn)行每種病毒檢測(cè)時(shí)至少接種2孔。繼續(xù)培養(yǎng)至少至第21天，剩余細(xì)胞樣本－60℃或以下保存?zhèn)溆谩?/span>

（7）在第14天接種陽(yáng)性對(duì)照病毒：?。?span>5）制備的指示細(xì)胞接種適量陽(yáng)性對(duì)照病毒，置36℃±1℃、5%CO2培養(yǎng)箱吸附2小時(shí)，吸棄上清液，加入適量細(xì)胞維持液，置36℃±1℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)7天，對(duì)于BT細(xì)胞，BVDV可作為病變陽(yáng)性對(duì)照，BPI3可作為HAd陽(yáng)性對(duì)照，牛副流感病毒3型（PI3）、牛腺病毒（BAV-3）、牛細(xì)小病毒（BPV）以及牛腹瀉病毒（BVDV）可作為IF檢測(cè)陽(yáng)性對(duì)照；對(duì)于MDBK細(xì)胞，呼腸孤病毒3型（REO3）和PI3可分別作為細(xì)胞病變及HAd檢查陽(yáng)性對(duì)照，PI3、BAV-3、BVDV、REO-3為IF檢測(cè)陽(yáng)性對(duì)照；對(duì)于Vero細(xì)胞，Pl3可作為細(xì)胞病變及HAd檢查陽(yáng)性對(duì)照，PI3及REO-3作為IF檢測(cè)陽(yáng)性對(duì)照?？刹辉O(shè)立狂犬病病毒（Rabies）陽(yáng)性對(duì)照。所有IF檢測(cè)陽(yáng)性對(duì)照病毒應(yīng)接種100～300CCID50。

（8）接種陰性對(duì)照及供試品的細(xì)胞培養(yǎng)物在接種后每日觀察細(xì)胞病變情況，在接種后至少21天或末次傳代后至少7天時(shí)分別進(jìn)行病變觀察、HAd檢查及IF檢測(cè)，陽(yáng)性對(duì)照培養(yǎng)物在接種后第7天或10%細(xì)胞出現(xiàn)CPE時(shí)可進(jìn)行IF檢測(cè)。

進(jìn)行血吸附檢查時(shí)，用雞與豚鼠血紅細(xì)胞在2～8℃及20～25℃進(jìn)行檢測(cè)。

進(jìn)行熒光抗體檢測(cè)時(shí)，將細(xì)胞固定后采用直接或間接免疫熒光抗體檢查法，至少應(yīng)對(duì)BVDV、PI3、BAV-3、BPV、REO3以及 Rabies進(jìn)行檢查，結(jié)果均應(yīng)為陰性。

（9）結(jié)果判定　陰性對(duì)照應(yīng)無(wú)細(xì)胞病變，血吸附檢查應(yīng)為陰性，熒光抗體檢測(cè)應(yīng)為陰性；陽(yáng)性對(duì)照應(yīng)有明顯的細(xì)胞病變，血吸附檢查應(yīng)為陽(yáng)性，熒光抗體檢測(cè)應(yīng)為陽(yáng)性，判為試驗(yàn)成立。供試品如無(wú)細(xì)胞病變，血吸附檢查為陰性，且熒光抗體檢測(cè)為陰性，判定為符合要求。待測(cè)樣本如出現(xiàn)細(xì)胞病變，或血吸附檢查為陽(yáng)性，或任何一種熒光抗體為陽(yáng)性，則判定為不符合要求。

經(jīng)病毒滅活處理的牛血清，滅活前取樣檢測(cè)后若任何一項(xiàng)檢測(cè)顯示為陽(yáng)性，不建議用于生產(chǎn)。除非可鑒別出污染的病毒，且病毒滅活工藝驗(yàn)證研究顯示其污染量可被有效滅活時(shí)方可使用，如果滅活前BVDV病毒檢測(cè)為陽(yáng)性，滅活后還應(yīng)取樣采用敏感的方法檢測(cè)BVDV，結(jié)果陰性為符合要求。

未經(jīng)病毒滅活處理的牛血清若任何一項(xiàng)檢測(cè)顯示為陽(yáng)性，則不得用于生產(chǎn)。

不能用感染試驗(yàn)檢測(cè)的牛源性病毒可采用核酸檢測(cè)法，但應(yīng)采用較大量的樣品提取核酸（如25～50ml的血清樣本），并計(jì)算合并血清的檢測(cè)限。